高级教程

主要讲述PyMOL中脚本的编写、命令的自定义、插件的编写。

PyMOL脚本、命令、插件

PyMOL支持Python 编程语言,故可以借助python让pymol无所不能,pymol除了显示软件,也能成为计算软件。

脚本:把pymol作为一个模块,实现一些计算功能。 命令:pymol中内置了一些命令,如color、dist等,我们也可以自定义新的命令。 插件:pymol中内置了一些插件,如apbs-pdb2pqr等,我们也可以自定义插件。

注解

编写PyMOL脚本、命令、插件,需要有一定的python基础。python教程:HOW2PY

安装PyMOLwiki中的命令

这里我以这个命令 `FocalBlur<https://pymolwiki.org/index.php/FocalBlur>`_ 为例进行演示。

  1. 下载 focal_blur.py脚本,https://raw.githubusercontent.com/Pymol-Scripts/Pymol-script-repo/master/focal_blur.py 比如下载到D盘根目录下面 d:/focal_blur.py
  2. 打开pymol,在命令窗口输入run d:/focal_blur.py 就完成了安装。
  3. 运行命令 FocalBlur aperture=4,samples=400,ray=0

FocalBlur一共有5个参数:

  • aperture
  • samples
  • ray
  • width
  • height

该命名和单反的光圈相关,控制景深的。 需要开启ray=1 才能看到光圈景深的效果

修改PyMOL的默认设置

我个人习惯保存突变的时候使用白色背景、关闭光照阴影,而默认的是透明背景, 每次保存图片的时候都需要用命令” set ray_opaque_background, 1 “设置白色背景,比较麻烦。 我们可以通过下面的方法,修改PyMOL的默认设置。

建议创建一个脚本 pymolset.py, 假设该脚本存放在D盘

# AUTOGENERATED FILE
from pymol import cmd, invocation
cmd.set("bg_rgb", 'white')
cmd.set("ray_opaque_background", '1')
cmd.set("ray_shadow", 'off')

如果不知道如何定义pymolset.py,可以通过 save_settings.py

如果无法下载从国外网站下载,可通过下面的百度云链接进行下载。

链接:https://pan.baidu.com/s/1vWNU5ssyOTvMkPAHVqQ27g?pwd=ejsg
提取码:ejsg

在PyMol 命令窗口下,先修改成自己想要的设置,运行下面的命令就可以自动生成pymolset.py 文件。

run save_settings.py
save_settings pymolset.py

生成pymolset.py后,用文本编辑器打开进行编辑修改,保留自己需要设置就可以了。

创建命令

这里我举一个例子: 计算两个苯环之间的距离或者五元环和苯环之间的距离。

拓展:计算2个object的中心距离。

首先我们为命令起名字,要求是简洁高效,通过命令就能猜测到这个命令的功能。 这里我起的脚本名 dist_center。 核心是在python 脚本中定义这个函数,并cmd.extend拓展命令。 框架如下

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from pymol import cmd
def dist_center(obj1="obj01",obj2="obj02",showflag=True):
    pass
cmd.extend("dist_center", dist_center)

完整代码(dist_center_2obj.py)如下:

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"""
DESCRIPTION
measure the distance between the centers of two objects
the object usually is  benzene, pyridine and other cyclo object


more information at: 
http://pymol.chenzhaoqiang.com/intro/advanceManual.html

AUTHOR
Zhaoqiang Chen, 2017
Please inform me if you use/improve/like/dislike/publish with this script.
email: 744891290@qq.com
"""
from pymol import cmd,math 
def getcenterofatoms(atoms):
    '''

    '''
    x=0
    y=0
    z=0
    for atm in atoms:
        x+=atm.coord[0]
        y+=atm.coord[1]
        z+=atm.coord[2]
    numatm=float(len(atoms))
    x=x/numatm
    y=y/numatm
    z=z/numatm
    return [x,y,z]
def getdist(cen1,cen2):
    '''
    '''
    dx=cen1[0]-cen2[0]
    dy=cen1[1]-cen2[1]
    dz=cen1[2]-cen2[2]
    dist=dx*dx+dy*dy+dz*dz
    return math.sqrt(dist)

def dist_center(obj1="obj01",obj2="obj02",showflag=True):
    '''
    usage1:
    dist_center obj01,obj02 
    usage2:
    dist_center obj01,obj02,1 
    usage3:
    dist_center obj01,obj02,0
    usage1 is equal to usage2!

    '''
    obj1atoms=cmd.get_model(obj1).atom
    obj2atoms=cmd.get_model(obj2).atom
    obj1center=getcenterofatoms(obj1atoms)
    obj2center=getcenterofatoms(obj2atoms)
    dist = getdist(obj1center,obj2center)
    print("distance: %.2f"%(dist ))
    if showflag:
        cmd.pseudoatom('cen1', pos=obj1center)
        cmd.pseudoatom('cen2', pos=obj2center)
        cmd.distance("dist","cen1","cen2")
        
cmd.extend("dist_center", dist_center)
    


演示如下:

载入蛋白,运行run dist_center_2obj.py命令; 把TRY-72侧链苯环6个原子保存为obj01; 把HIS-351侧链咪唑环的5个原子保存为obj02; 运行命令 dist_center obj01,obj02 即可测量距离。

../_images/dist_COMMAND.png

创建向量draw_vector

拉伸动力学需要创建向量,对向量进行可视化检查。

下载脚本(右击另存为):addproteinBox.py

运行

run draw_vector.py
draw_vector 67,92,77,66,92,76

注解

参数说明: 命令draw_vector,向量起点坐标x,向量起点坐标y,向量起点坐标z,向量终点坐标x,向量终点坐标y,向量终点坐标z

编写脚本: draw_vector.py

from pymol import cmd, cgo
from pymol.cgo import *
# 全局变量,用于跟踪向量数量
vector_counter = 1

def draw_vector(x1, y1, z1, x2, y2, z2):
    global vector_counter  # 引入全局计数器

    # Convert the arguments to floats to ensure they are real numbers
    x1, y1, z1, x2, y2, z2 = float(x1), float(y1), float(z1), float(x2), float(y2), float(z2)

    # 定义箭头头部的大小
    arrow_radius = 0.3 # 箭头底部的半径
    arrow_length = 0.5  # 箭头的长度
    cylinder_radius = 0.1  # 圆柱的半径

    # 计算箭头起点 (箭头的尾部,也就是圆柱的末端)
    vec_x = x2 - x1
    vec_y = y2 - y1
    vec_z = z2 - z1
    norm = (vec_x**2 + vec_y**2 + vec_z**2)**0.5

    # 箭头尾端位置 (让箭头稍微缩短一段)
    arrow_base_x = x2 - (arrow_length * vec_x / norm)
    arrow_base_y = y2 - (arrow_length * vec_y / norm)
    arrow_base_z = z2 - (arrow_length * vec_z / norm)


    print("coord1",x1,y1,z1)
    print("coord2",x2,y2,z2)
    print("middle",arrow_base_x, arrow_base_y, arrow_base_z)
    # 定义CGO对象(圆柱 + 箭头)
    vector_cgo = [


        # 箭头部分 (CONE)

        cgo.CONE, arrow_base_x, arrow_base_y, arrow_base_z, x2, y2, z2, arrow_radius, 0.0,
        1.0, 0.0, 0.0, # 箭头底部颜色 (红色)
        1.0, 0.0, 0.0,# 箭头顶端颜色 (红色)
        1.0, 1.0, # 封闭圆锥底部

        # 圆柱体部分

        cgo.CYLINDER, x1, y1, z1, arrow_base_x, arrow_base_y, arrow_base_z, cylinder_radius,
        1.0, 0.0, 0.0,  # 起点颜色 (红色)
        1.0, 0.0, 0.0,  # 终点颜色 (红色)

        # w = 0.06 # cylinder width
        # l = 0.75 # cylinder length
        # h = 0.25 # cone hight
        # d = w * 1.618 # cone base diameter
        # cgo.CONE,   l, 0.0, 0.0,        h+l, 0.0, 0.0,           d, 0.0,
        # 1.0, 0.0, 0.0,
        # 1.0, 0.0, 0.0,
        # 1.0, 1.0,

    ]

    # 使用递增的名字
    obj_name = "vector_%03d" % vector_counter
    vector_counter += 1  # 递增计数器

    # 加载CGO对象
    cmd.load_cgo(vector_cgo, obj_name)

# 扩展 PyMOL 命令,使其支持 draw_vector
cmd.extend("draw_vector", draw_vector)

更多PyMol CGO定义:

PyMol CGO的定义

注解

注意一定要严格按照PyMol CGO规则进行定义。 和常见的CGO语法不完全一致。

基于states的号码导出分子

场景:

虚筛挑选分子的时候,记录感兴趣的state。

思路: 1. 需要保存的states转换成列表。 2. 迭代states进行保存。

代码文件 save_states.py :

from pymol import cmd

def save_states(obj,states=""):
    '''
    save_states obj01,states ="1,3,4"
    '''
    stats = []
    states=states.replace('"','')
    for i in states.split(','):
        print(i)
        i=int(i)
        stats.append(i)
    for i in stats:
        newfilename="%s_%s.sdf"%(obj,i)
        cmd.save(newfilename,obj,state=i)

cmd.extend("save_states",save_states)

使用说明:

run save_states.py
save_states obj01,states ="1,3,4"

显示蛋白残基之间的盐桥

思路:

  1. 先定位带负电荷的氨基酸上的羧基上的氧原子;
  2. 然后定位正电荷氨基的Lys 上的带正电荷的N原子;
  3. 最后显示这两类原子在4A范围之内的配对情况。

方法1 命令行版本

注解

PyMOL>select negative, (resn ASP+Glu and name OD*+OE*)

PyMOL>select positive, (resn Lys and name NZ) or (resn arg and name NE+NH*)

PyMOL>distance saltbridge, (negative ), (positive ), 4.0, 0

PyMOL>select negative, (resn ASP+Glu and name OD*+OE*)
PyMOL>select positive, (resn Lys and name NZ) or (resn arg and name NE+NH*)
PyMOL>distance saltbridge, (negative ), (positive ), 4.0, 0

方法2 拓展成一个命令 saltbridge.py

from pymol import cmd

def show_saltbridge(dist=4.0):

    cmd.select("negative","resn ASP+Glu and name OD*+OE*")
    cmd.select("positive","(resn Lys and name NZ) or (resn arg and name NE+NH*)")
    cmd.distance("saltbridge","negative","positive",dist,0)


cmd.extend("show_saltbridge", show_saltbridge)

使用命令

PyMOL>run saltbridge.py
PyMOL>show_saltbridge 3
PyMOL>show_saltbridge

用法如图所示:

../_images/salt_bridge2020-02-23_205705.441408.png

两个氨基酸之间存在黄色虚线,说明这个氨基酸存在盐桥。

把蛋白装入盒子中,并可视化长宽高

计算蛋白的长宽高,并可视化。 下载脚本(右击另存为) addproteinBox.py

在PyMOL 命令行,运行下述命令,就可以该蛋白添加盒子,并显示长宽高。

PyMOL>run addproteinBox.py
PyMOL>add_proteinbox 4hbk
../_images/addbox2020-05-12_232357.532120.png

左下角显示XYZ坐标

VMD左下角默认会显示XYZ坐标,PyMOL也可以做到。 下载脚本(右击另存为) axes.py

在PyMOL 命令行,运行下述命令,就可以添加XYZ坐标了。

PyMOL>run axes.py
PyMOL>axes
../_images/axes2020-05-22_215258.788587.png

加载坐标颜色文件

文件(test.xyzrgb)格式如下

x y z r g b

下载笔者编写的脚本 loadxyzrgb_sub.py

在 PyMOL 命令行,运行下述命令,就可以可视化坐标颜色文件了。

PyMOL>run loadxyzrgb_sub.py
PyMOL>loadxyzrgb test.xyzrgb
../_images/xyzrgb2020-06-16_201920.103565.png

提取配体周围的位点

from pymol import cmd
from pymol import util
# example 6SP6 KJK    A

def extractSiteByLig(pdbid,ligid,radius=4,chainid=None):
    '''
    '''
    cmd.delete('all')
    cmd.fetch(pdbid)

    if not  chainid:
        cmd.select("ligall","resn %s"%ligid)
        atms_lig = cmd.get_model("ligall").atom
        chains_lig = [    atom.chain     for atom in atms_lig ]
        chains_lig = list(set(chains_lig))
        chainid = chains_lig[0]

    cmd.select("lig_%s"%chainid," chain %s and resn %s "%(chainid,ligid))
    cmd.select("site","byres (lig_%s expand %s)"%(chainid,radius))
    cmd.create("pocket","site")
    cmd.disable("all")
    cmd.enable("pocket")
    cmd.do("as sticks,pocket")
    util.cba(144,"pocket")
    util.cba(120,"pocket and resn %s"%ligid)
    newfile="%s_%s_%s_%s.pdb"%(pdbid,ligid,chainid,radius)
    cmd.save(newfile,"site")

# extractSiteByLig 6SP6, KJK
cmd.extend("extractSiteByLig",extractSiteByLig)

pdbid = '6SP6'
ligid = 'KJK'
extractSiteByLig(pdbid,ligid)

突变mutate命令行插件

编写mutate命令插件脚本mutate.py

from pymol import cmd

#refer: https://pymolwiki.org/index.php/Rotkit
#qq group: 294266356

def mutate(molecule, chain, resi, target="CYS", mutframe="1"):
    target = target.upper()
    cmd.wizard("mutagenesis")
    cmd.do("refresh_wizard")
    cmd.get_wizard().set_mode("%s" % target)
    selection = "/%s//%s/%s" % (molecule, chain, resi)
    cmd.get_wizard().do_select(selection)
    cmd.frame(str(mutframe))
    cmd.get_wizard().apply()
    # cmd.set_wizard("done")
    cmd.set_wizard()
    # cmd.refresh()


cmd.extend("mutate", mutate)

或者直接下载笔者编写的脚本 mutate.py

在 PyMOL 命令行,运行下述命令,就可以添加mutate命令了。

PyMOL>run mutate.py
PyMOL>mutate 4hbk, chain=A, resi=2, target=SER
../_images/mutate2021-10-11_204824.666881.png

单点全扫描突变插件

插件:

from pymol import cmd

from pymol import cmd

#refer: https://pymolwiki.org/index.php/Rotkit
#qq group: 294266356

def mutate(molecule, chain, resi, target="CYS", mutframe="1"):
    target = target.upper()
    cmd.wizard("mutagenesis")
    cmd.do("refresh_wizard")
    cmd.get_wizard().set_mode("%s" % target)
    selection = "/%s//%s/%s" % (molecule, chain, resi)
    cmd.get_wizard().do_select(selection)
    cmd.frame(str(mutframe))
    cmd.get_wizard().apply()
    # cmd.set_wizard("done")
    cmd.set_wizard()
    # cmd.refresh()


cmd.extend("mutate", mutate)


resns=['']
def mutate_others(objname="P4G3",chain='A',resi=1):
    '''
    help: mutate_others objname,118
    mutate_others P4G3,A,7
    '''
    RESIDUES=['ALA', 'ILE', 'LEU', 'MET', 'VAL', 'PHE', 'TRP', 'TYR', 'ASN', 'CYS', 'GLN', 'SER', 'THR', 'ASP', 'GLU', 'ARG', 'HIS', 'LYS', 'GLY', 'PRO']
    for resn in RESIDUES:
        newfile="%s_%s_%s"%(objname,resi,resn)
        # cmd.mutate()
        cmd.do( 'mutate %s,%s,%s,%s'%(objname, chain, resi, resn))
        cmd.save("%s.pdb"%newfile,objname)

cmd.extend("mutate_others", mutate_others)

用法:

对P4G3蛋白的A链上的7号残基进行全扫描突变并保存文件

mutate_others P4G3,A,7

平均构象 states_avg.py

Cameron Mura <cmura@ucsd.edu>在2005年写了一个脚本 average3D.py , 该脚本太旧而无法使用,笔者在其基础上进行了修改,创建脚本 mutate.py

注解

在修改过程,遇到内存崩溃的坑,解决办法为states创建独立的变量。 obj_states=[]

代码如下:

"""
AUTHOR:
 Cameron Mura <cmura@ucsd.edu>; 07/2005


update:  zhaoqiang Chen <744891290@qq.com>; 05/2022 support python3
http://www.bioinformatics.org/cgi-bin/viewvc.cgi/pdbwiki/trunk/scripts/average3d/average3d.py?revision=36&view=markup

SYNOPSIS:
 Python module "average3d.py" for averaging 3D coordinates of multiple states
 of a single PyMOL molecular object

USAGE:
 See this source file for now... in particular, any notes under individual
 function definitions, such as 'avgStates()'.

refer: average3D.py
http://www.bioinformatics.org/cgi-bin/viewvc.cgi/pdbwiki/trunk/scripts/average3d/average3d.py?revision=36&view=markup

The script(average3D.py) is too old and outdated to use, so I created the script "states_avg.py".

run e:/states_avg.py
fetch 1wym
states_avg 1wym

"""


from pymol import cmd
from math import sqrt,pow


def states_avg(objectstr='all'):
    ##save mem
    # cmd.undo_disable()
    objectstr= str(objectstr)
    first=int(1)
    last=int(0)
    num_states_tot = cmd.count_states(objectstr)
    print("num states",num_states_tot)

    last=num_states_tot
    num_states2avg = last - first + 1

    newobj='%s_avg'%(objectstr)
    cmd.create(newobj,objectstr,1)

    tmpobj='%s_avgtmp'%(objectstr)
    cmd.create(tmpobj,objectstr,1)



    newobj_chempy = cmd.get_model(tmpobj,1)


    obj_states=[]

    for s in range(1,num_states2avg+1):
        stat = cmd.get_model(objectstr,s)
        obj_states.append(stat)

    # any object index start from 1

    for at in newobj_chempy.atom:
        this_at_idx = at.index
        sum_x = sum_y = sum_z = 0.0
        avg_x = avg_y = avg_z = 0.0

        for s in range(1,num_states2avg+1):
            this_x = obj_states[s-1].atom[this_at_idx-1].coord[0]
            this_y = obj_states[s-1].atom[this_at_idx-1].coord[1]
            this_z =  obj_states[s-1].atom[this_at_idx-1].coord[2]
            sum_x += this_x
            sum_y += this_y
            sum_z += this_z

        # print(sum_x,sum_y,sum_z)
        avg_x = sum_x / num_states2avg
        avg_y = sum_y / num_states2avg
        avg_z = sum_z / num_states2avg
        # # at.coord[0] = avg_x
        # at.coord[0] = avg_y
        # at.coord[0] = avg_z
        # print(avg_x,avg_y,avg_z,this_at_idx)

        cmd.alter_state(1,'%s and index %d'%(newobj,this_at_idx),'x=%.3f'%avg_x)
        cmd.alter_state(1,'%s and index %d'%(newobj,this_at_idx),'y=%.3f'%avg_y)
        cmd.alter_state(1,'%s and index %d'%(newobj,this_at_idx),'z=%.3f'%avg_z)
        # print("update success")

    print("update success ^ ^   congratulations")
    cmd.delete(tmpobj)
# make it directly callable in PyMOL:
cmd.extend('states_avg',states_avg)

使用方法:

下载笔者编写的脚本 mutate.py ,保存到E盘,

这里以PDB ID: 1WYM为例,运行如下命令:

run e:/states_avg.py
fetch 1wym
states_avg 1wym
../_images/states_avg2022-05-04_155335.710707.png

PyMol的宏录制

点击 File->Log File-> Open File 填写宏的名字 xxx.pml 然后操作PyMOL, 操作完成后点击 File->Log File-> close; 文本编辑器(如vscode)打开宏文件就可以查看里面的命令。

PyMol插件PyVOL推荐

PyVOL介绍

pyvol github 仓库: https://github.com/schlessinger-lab/pyvol 。 PyVOL是一个对蛋白口袋进行可视化的pymol插件。

口袋通常由氨基酸残基及其包裹的空间组成,为了可视化的美观,建议在空间中填充格点。

PyVOL安装

经过我的测试,发现无法在windows上的pymol2+上面进行安装。 只能安装在linux的pymol上。

通过conda安装msms

conda install -c bioconda msms

安装后,把msms所在目录添加到环境变量path中。

从官网下载 pyvol插件 pyvol-installer.zip:

如果如法下载,可通过百度云进行下载:

链接:https://pan.baidu.com/s/1TfYZDXBgZPUZxFG2S58H0Q
提取码:j9z7

在pymol中点击 Plugins -》 Plugin Manager -》 Install New Plugin -》 Install from local file -》 Choose file… 进行安装。

pyvol使用

注解

对于一些冷冻电镜解析的超大蛋白,使用该软件可能会报错。

建议参数如下:

Protein Pymol Selection: all
minimum volume: 100
dsplay mode: Sphere

基于产生的结果,对口袋进行修饰(删除冗余格点),并创建新的object,显示成surfce形式。

../_images/pyvol2021-12-12_140350.641250.png

PyMol插件parKVFinder-win推荐

ParKVFinder-win介绍

ParKVFinder github 仓库: https://github.com/LBC-LNBio/parKVFinder-win 。 ParKVFinder 是一个对蛋白口袋进行可视化的pymol插件。

注解

需要使用schrodinger版本的pymol

口袋通常由氨基酸残基及其包裹的空间组成,为了可视化的美观,建议在空间中填充格点。

ParKVFinder-win安装

这是专门针对windows系统的软件, PyMOL2+的插件。

安装流程如下:

  • step1 通过github仓库下载 parKVFinder-win-master.zip 文件。
  • step2 解压parKVFinder-win-master.zip到本地路径,比如解压到D盘目录,在环境变量中增加变量”KVFinder_PATH”,值设置为”D:parKVFinder-win-master”或者”D:parKVFinder-win-masterparKVFinder-win64.exe”。在个人电脑上设置为前者显示成功。
  • step3 找到PyMOL的安装目录,打开里面的**Conda-Prompt.bat**的命令窗口,输入命令”pip3 install toml”,安装python模块toml。
  • step4 从github的 release仓库 中下载最新版本的 PyMOL2-parKVFinder-Tools.zip 的PyMOL插件。
  • step5 打开pymol2,点击 plugin->plugin manager -> install new plugin ->choose file ->PyMOL2-parKVFinder-Tools.zip。

看到提示“Plugin pymol2-parKVFinder-Tools has been installed” 说明安装成功。

ParKVFinder-win使用

载入蛋白,点击plugin->pymol2-parKVFinder-Tools,打开相应的界面。 点击 refresh->run kvfinder就可以了。 结果如下,可以看到检测到的空腔的体积和表面积以及氨基酸残基组成。

../_images/kvf2022-03-16_223847.990924.png

PyMol插件CAVER推荐

CAVER介绍

CAVER 官网: https://caver.cz/index.php

百度网盘链接: https://pan.baidu.com/s/1QWsPAvuyVV3M1k22jI_M7w?pwd=nihg

CAVER 是一款用于分析蛋白质通道和孔道的工具,特别适用于可视化分子在蛋白质结构中的解离路径。 隧道是从埋在蛋白质核心中的空腔通向周围溶剂的空隙通道。 通道穿过蛋白质结构,其两端都通向周围溶剂。

注解

CAVER 提供了多种版本,方便用户根据需求选择,包括 1. 命令行版本、 2. PyMol 插件以及 3. 图形界面版本(CAVER Analyst) 4. 在线服务器版本: https://loschmidt.chemi.muni.cz/caverweb/

主要功能:

  1. 对动力学轨迹进行可视化;比如可视化SMD过程中小分子的解离路径;

这里我主要介绍Caver的PyMOL插件版本。

Caver插件安装

这是专门针对windows系统的软件, PyMOL2+的插件。

安装流程如下:

  • step1 通过github仓库下载

caver-pymol-plugin-3.0.3.zip 文件。

(base) C:\Users\Lenovo>java -version
java version "1.8.0_411"
Java(TM) SE Runtime Environment (build 1.8.0_411-b09)
Java HotSpot(TM) 64-Bit Server VM (build 25.411-b09, mixed mode)

电脑上安装的是 Java SE Runtime Environment(JRE)版本 1.8.0_411。 这是 Java 8 的一个更新版本,其中:

1.8.0_411 表示这是 Java 8 的第 411 个更新版本。
Java(TM) SE Runtime Environment 表示这是 Java 的标准版运行时环境。
  • step5 打开pymol2,点击 plugin->plugin manager -> install new plugin ->choose file ->caver-pymol-plugin-3.0.3.zip 。
../_images/caver_plugin2024-09-29_131502.068555.png

看到提示“Plugin CAVER3 has been installed” 说明安装成功。

../_images/CAVER32024-09-29_132557.123365.png

CAVER3的使用

载入T4 lysozyme蛋白(PDB ID: 4W52),点击plugin->Legacy Plugins>Caver 3.0.03 ,打开相应的界面。

../_images/caver_start2024-09-29_142316.663774.png

一共找到了2条通道,

和 Caver WEB: https://loschmidt.chemi.muni.cz/caverweb/?action=results&job=gpmkqm&analysis=single_structure& 结果一致,如下图所示:

../_images/pathway2024-09-29_144125.948209.png